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– Comprendre et appliquer les diverses méthodes et techniques de quantification des acides nucléiques ARN et ADN
– Acquérir les connaissances théoriques et pratiques de la dPCR
– Quantification absolue
– Avoir une vue d’ensemble des logiciels couramment utilisés pour l’analyse des résultats
MATINS : COURS ET TRAVAUX DIRIGÉS
Rappel sur la technique de la qPCR
– Rappels sur les fondamentaux de la PCR quantitative, notion de Cq, formats de fluorescence, méthodes de calcul de l’efficacité
– Mise au point d’une PCR quantitative : Optimisation, Validation, Plan d’expérience
– Stratégies de Normalisation, Dilutions etc.
– Calibration et droite d’étalonnage
Présentation de la technique de la dPCR :
– Génération et partition en micro gouttelettes
– Préparation des échantillons
– Utilisation du système de fluidique
– Lecture par fluorescence
– Estimation de la quantification et concentration de la cible
– Correction de l’estimation avec la Loi Poisson et ses différents paramètres
Stratégies de la dPCR :
– Quantification absolue : détermination du nombre de copies d’un gène
– Variation du nombre de copies : CNV
– Détection d’un évènement rare : mutation rare avec détermination de l’abondance d’une mutation dans un mélange de cellules normales
– Quantification de pathogènes : virus, bactéries, parasites
– Expression gènique : intérêt pour visualiser de faibles variations d’expression
NORMES DIGITAL MIQE
Travaux dirigés :
– Design et conception des amorces, choix des amorces, résolution des problèmes de spécificité et de sensibilité
– Etude de cas et analyses de résultats à partir d’exemples
Après-midi : travaux pratiques
– Mise en place de la méthode de quantification absolue avec détermination du nombre de copies d’un gène et/ou quantification de pathogène : virus, bactéries, parasites ...
– Extraction et purification d’ADN avec différentes méthodes
– Contrôle du dosage et pureté
– Préparation des échantillons
– Plan de plaque
– Lecture par fluorescence
– Interprétation des résultats
– Mise en place de la méthode par expression génique avec pour intérêt la visualisation de faibles variations d’expression
– Extraction et purification d’ARN
– Contrôle du dosage et pureté
– Reverse transcriptase
– Préparation des échantillons
– Plan de plaque
– Lecture par fluorescence
– Interprétation des résultats
– Optimisation de l’ensemble des contrôles et leurs intérêts (référence au Digital MIQE)
Tout public ayant des connaissances de bases en biologie moléculaire.
Maîtriser les techniques de base de la biologie moléculaire
40 % Enseignements - 10 % Travaux dirigés - 50 % Travaux pratiques
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